Notre mission est de fournir des services complets d’analyse par cytométrie en flux et de tri cellulaire en termes de conception expérimentale, d’instrumentation, de formation, d’assistance technique et d’orientation scientifique.
Le laboratoire de cytométrie en flux de l’ILD, qui fonctionne sur la base d’une rémunération à l’acte, fournit aux chercheurs et aux cliniciens des instruments, une expertise scientifique et des conseils. L’analyseur spectral ID7000 Spectral Cell Analyser, l’instrument phare de Sony Biotechnology, fait partie de notre plus récente acquisition. Le ID7000 est un des cyrtomètres les plus avancés sur le marché et il offre au chercheur(se) la possibilité d’analyser des expériences de plus de 44-couleurs. Il est aussi possible d’utiliser l’un de nos deux cyrtomètres conventionnels : un BD LSR Fortessa et un BD FACSCanto II. Le FACSAria IIu et le FACSAria Fusion, deux trieurs de cellules, peuvent trier des cellules en milieu BSL1 et BSL2. La plateforme est également équipée d’un compteur de cellules automatisé. Le compteur de cellules CellDrop FL (Denovix) permet un comptage précis des cellules et la détermination de leur taille. De plus, plusieurs stations d’analyse des données de cytométrie en flux sont également disponibles.
Grâce à un ensemble de lasers, de prismes, de miroirs et de filtres, les instruments de cytométrie en flux nous permettent d’examiner plusieurs paramètres physiques et fluorescents d’une seule cellule. Ces paramètres physiques et fluorescents peuvent être analysés simultanément et, comme les cytomètres de flux peuvent analyser des dizaines de milliers de cellules par seconde, il est facile de caractériser quantitativement plusieurs populations de cellules avec une résolution allant à un cellule. C’est cette capacité de multiplexage des paramètres qui fait de la cytométrie en flux un outil extrêmement polyvalent et puissant pour les chercheurs et les cliniciens. En outre, les trieurs de cellules peuvent séparer physiquement ces populations dans différents vaisseaux ou déposer des cellules individuelles dans une plaque multipuits pour le clonage.
La cytométrie en flux (CMF) est une technologie polyvalente qui permet de quantifier la fluorescence et les caractéristiques structurelles des particules (le plus souvent des cellules). Les analyseurs CMF permettent une analyse quantitative rapide des particules en suspension ou des protéines solubles provenant du sérum, des cellules fractionnées, des cellules trypsinisées ou des tissus dissociés. Les chercheurs et les cliniciens peuvent obtenir plusieurs statistiques au niveau d’une cellule unique et d’une population. Les trieurs de cellules peuvent également analyser les particules et, en outre, séparer physiquement les cellules d’intérêt à un niveau de pureté élevé pour les essais en aval. Une liste non exhaustive des différents essais de cytométrie en flux est présentée ci-dessous.
L’avantage de l’utilisation de la CMF est qu’il s’agit d’un système extrêmement rapide et qu’une quantité relativement faible d’échantillons est nécessaire. Le traitement des échantillons, l’acquisition, l’analyse et l’interprétation des données peuvent être effectués en une seule journée. En outre, dans le cas de la CMF multiparamétrique, plusieurs paramètres ou couleurs fluorescents sont analysés simultanément. Nous pouvons par exemple identifier le phénotype et vérifier la viabilité, la vitalité, la capacité de prolifération et l’état du cycle cellulaire de chaque cellule. Par conséquent, comme des milliers de cellules peuvent être rapidement analysées, nous pouvons identifier des populations de cellules extrêmement rares et obtenir des statistiques de population avec une plus grande précision.
Apoptose
Autophagie
Flux de calcium
Signalisation cellulaire
Tri cellulaire
Suivi des cellules
Viabilité cellulaire
Clonage
Détection de molécules solubles
Analyse de l’ADN/du cycle cellulaire
Immunophénotypage
pH intracellulaire
Détection des protéines intracellulaires
Potentiel membranaire
Phagocytose
Prolifération
Efficacité de la transfection/transduction
Trieur de cellules numérique sensible à grande vitesse
Tri de cellules par cytométrie en flux
Tri de cellules en vrac à 4 voies
Tri de cellules uniques pour le clonage
Détection de 20 paramètres ; 18 couleurs
Échantillons BSL I et BLS II
Buse interchangeable
Filtres d’émission interchangeables
Pression réglable dans la gaine
Uniquement le personnel du laboratoire
Contactez le personnel du laboratoire de cytométrie en flux de l’ILD
Remplir le formulaire de demande de tri cellulaire de l’ILD
Cytomètre en flux à spectre complet
Analyse par cytométrie en flux
Support de 24 tubes HTS
Plaque 96/384 puits HTS
Détecte 184 paramètres ; 182 couleurs
Détection spectrale de 360nm à 844nm
Analyse de pratiquement tous les fluorophores
Échantillons BSL I
Échantillons BSL II, sur demande
Analyse spectrale
Filtre virtuel
Assistance technique par le personnel du laboratoire
Utilisateurs formés
Calendrier de réservation LDI Core Scheduler
Cytomètre de flux numérique sensible équipé d’un échantillonneur à haut débit (HTS)
Analyse par cytométrie en flux
Plaque à 96 puits HTS
Détecte 20 paramètres ; 18 couleurs
Échantillons BSL I
Filtres d’émission interchangeables
Assistance technique par le personnel du laboratoire
Utilisateurs formés
Calendrier de réservation LDI Core Scheduler
Cytomètre de flux numérique de qualité clinique
Analyse par cytométrie en flux
Détecte 8 paramètres ; 6 couleurs
Échantillons BSL I
Filtres d’émission interchangeables
Assistance technique par le personnel du laboratoire
Utilisateurs formés
Calendrier de réservation LDI Core Scheduler
Compteur de cellules fluorescentes
Comptage automatisé des cellules vivantes/mortes à l’aide de bleu trypan ou d’orange d’adridine/iodure de propidium
Calcul du diamètre des cellules
Échantillons BSL I par pipetage direct
Échantillons BSL II utilisant des lames jetables
Aucune
Utilisateurs formés
Aucune réservation n’est nécessaire : premier arrivé, premier servi
Services de cytométrie en flux | Temps minimum facturé (min) | Interne McGill | Externe Public | Externe Privé |
Analyseur Sony ID7000 Full Spectrum | 15 | 35.00 | 85.00 | 100.00 |
Analyseur BD LSR Fortessa HTS | 15 | 30.00 | 65.00 | 80.00 |
Analyseur BD FACSCanto II | 15 | 30.00 | 65.00 | 80.00 |
BD FACSAria Fusion – Tri de cellules | 60 | 80.00 | 100.00 | 200.00 |
Compteur cellulaire Denovic CellDrop | N/A | Gratuit | Gratuit | N/A |
Assistance technique – analyseurs (supplémentaire) | 60 | 35.00 | 65.00 | 100.00 |
Formation – analyseurs (supplémentaire) | 60 | 35.00 | 65.00 | 100.00 |
Analyse de données/consultation | 60 | 35.00 | 65.00 | 100.00 |
Les plateformes de recherche de l’ILD utilisent le calendrier de réservation LDI Core Scheduler accessible sur le web
Le trieur de cellules FACSAria Fusion est exploité par le personnel du laboratoire. Pour programmer une expérience de tri cellulaire, veuillez suivre les instructions suivantes.
Étudiants et personnel de l’ILD :
Veuillez-vous connecter à notre système LDI Core Scheduler et réserver l’instrument FACSAria Fusion
Votre réservation sera approuvée si un opérateur est disponible et si le(s) formulaire(s) est(sont) reçu(s).
Utilisateurs externes :
Veuillez contacter le laboratoire de cytométrie en flux de l’ILD pour prendre rendez-vous.
Les utilisateurs formés peuvent utiliser l’ID7000, le LSR Fortessa, le FACSCanto II et le compteur de cellules CellDrop FL sans assistance 24 heures sur 24 et 7 jours sur 7 au laboratoire de cytométrie en flux de l’ILD. Pour demander une session de formation à l’instrument, veuillez contacter le laboratoire par courriel et remplir un formulaire d’information de l’utilisateur.
Le personnel hautement qualifié du laboratoire de cytométrie en flux de l’ILD peut acquérir et analyser vos expériences de cytométrie en flux. Veuillez nous contacter pour prendre rendez-vous. Nous évaluerons la faisabilité de votre expérience et programmerons votre analyse.
Institut Lady Davis Institute de recherches médicales, Salle E-415
Hôpital général juif
3999, chemin de la Côte Ste-Catherine
Montréal, Qc
H3T 1E2
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